Para qué te prepara:
La presente formación va dirigida a la acreditación de Competencias profesionales adquiridas a través de la experiencia laboral y de la formación no formal, y tiene como objetivo analizar las técnicas inmunológicas y bioquímicas de análisis y separación, incluyendo las técnicas de identificación genética, empleadas en el laboratorio de Análisis Clínico.
A quién va dirigido:
Este curso está dirigido a los profesionales del mundo de la sanidad, dentro del área profesional técnicas de laboratorio y a todas aquellas personas interesadas en adquirir conocimientos relacionados con la inmunología.
Titulación:
Doble Titulación Expedida por EUROINNOVA BUSINESS SCHOOL y Avalada por la Escuela Superior de Cualificaciones Profesionales
Objetivos:
- Analizar técnicas inmunológicas y bioquímicas de análisis y separación. - Definir las técnicas de identificación genética. - Actuar de forma correcta en un laboratorio de Análisis Clínico. - Demostrar una actitud de orden, rigor y conocimiento de procesos de análisis en el terreno experimental y manipulativo. - Actuar con criterios de seguridad e higiene en el acceso al laboratorio de Análisis Clínico.
Salidas Laborales:
Este profesional ejercerá su actividad en laboratorios de Análisis Clínico y afines donde desarrollará su labor en el área de análisis de muestras biológicas.
Resumen:
En el ámbito de la sanidad, los técnicos en inmunología son de primordial importancia ya que conocen todo lo relacionado con los procedimientos que se llevan a cabo en un laboratorio clínico. Así, con el presente curso se pretende analizar las técnicas inmunológicas y bioquímicas de análisis y de separación, incluyendo las técnicas de identificación genética, empleadas en los laboratorios de Análisis Clínicos.
Metodología:
Entre el material entregado en este curso se adjunta un documento llamado Guía del Alumno dónde aparece un horario de tutorías telefónicas y una dirección de e-mail dónde podrá enviar sus consultas, dudas y ejercicios. Además recibirá los materiales didácticos que incluye el curso para poder consultarlos en cualquier momento y conservarlos una vez finalizado el mismo.La metodología a seguir es ir avanzando a lo largo del itinerario de aprendizaje online, que cuenta con una serie de temas y ejercicios. Para su evaluación, el alumno/a deberá completar todos los ejercicios propuestos en el curso. La titulación será remitida al alumno/a por correo una vez se haya comprobado que ha completado el itinerario de aprendizaje satisfactoriamente.
Temario:
- Interpretar el contenido de la formulación. - Clasificar las peticiones en función de su procedencia. - Clasificar las peticiones en función de su prioridad. - Distribuir las peticiones en las secciones del laboratorio. - Elaborar listados de trabajo. - Realizar un inventario. - Definir las necesidades mínimas de material. - Cumplimentar órdenes de pedidos. - Identificar los distintos aparatos de un laboratorio que requieren revisiones periódicas para su mantenimiento. - Elaborar fichas con los datos necesarios para el control de aparatos (número de revisiones, responsables, protocolo de actuación en caso de fallo del equipo y otros datos). - Modificar la estructura de campos de la base de datos. - Introducir datos de pacientes. - Realizar búsquedas de datos. - Imprimir de forma «indizada» (según índice). - Elaborar los cuadros de presentación de datos. - Realizar consultas en las bases de datos. - Calcular parámetros estadísticos de actividad. - Redactar resúmenes de actividad con datos estadísticos. - Realizar búsquedas de información en bases de datos médicas. - Elaborar resúmenes de artículos científicos sobre técnicas de laboratorio. - Elaborar resúmenes de manuales técnicos de funcionamiento de equipos. - Documentación clínica. - Documentación no clínica. - Organigramas de centros sanitarios. - Organigrama de un laboratorio. - Funciones del personal de un laboratorio. - Sistemas de almacenamiento. - Métodos de valoración de existencias. - Normas de seguridad e higiene en los almacenes de centros sanitarios. - Tipos de equipos de un laboratorio clínico. - Mantenimiento periódico de los equipos de laboratorio. - Medidas a tomar en caso de fallo de los equipos. - Conocimientos básicos de informática. - Tipos y estructura de las bases de datos. - Aplicaciones informáticas de gestión y control de almacén. - Medidas de tendencia central. - Medidas de dispersión. - Representaciones gráficas de resultados. - Estructura de presentación de la información científica. - Búsqueda de información en bases de datos sanitarias. - Identificar los tipos de muestras. - Describir las características físico_químicas de las muestras. - Determinar si las muestras son adecuadas para proceder a su análisis. - Preparar tubos con anticoagulantes.. - Recoger orina de 24 horas. - Tomar muestras de exudado faríngeo. - Explicar al paciente, en una simulación, el método de recogida y las normas a seguir para la obtención de una muestra. - Congelar, liofilizar y reconstituir las muestras de suero o de plasma. - Centrifugar la sangre para la obtención de plasma y suero. - Centrifugar las muestras de orina. - Realizar los cálculos necesarios. - Medir (por pesada o volumetría) las cantidades de soluto determinadas. - Utilizar el material de vidrio adecuado para realizar la disolución. - Ajustar el pH de la disolución. - Expresar los datos de las disoluciones en distintas magnitudes (molaridad, normalidad, molalidad). - Utilizar los distintos tipos de pipetas. - Realizar las diluciones solicitadas. - Calcular la concentración final de la disolución diluida. - Concepto de espécimen y de muestra. - Características generales de la sangre. Diferencia entre sangre venosa y sangre capilar. Uso de sangre en ayunas. Utilización de suero o plasma. Hemólisis, lipemia o ictericia como fuentes de error. Anticoagulantes. - Características generales de la orina. Sustancias y elementos, formas analizables en muestras de orina. - Características generales de las heces. - Muestras seminales; LCR, líquidos serosos, exudados vaginales, exudados uretrales, exudados óticos, exudados conjuntivales y exudados nasofaríngeos; esputo y hemocultivos. - Obtención de plasma y suero. - Recogida de orina. - Recogida de heces. - Sistemas de transporte de las muestras. - Sistemas de recepción, identificación y distribución de las muestras. - Centrifugación de las muestras: fundamento de las técnicas de centrifugación. - Conservación de las muestras biológicas. - Normas de seguridad e higiene para la prevención de riesgos biológicos. - Preparar geles de agarosa. - Enfrentar antígenos y anticuerpos en reacciones de simple y doble difusión. - Determinar las concentraciones de antígenos mediante inmunodifusión radial. - Preparar los reactivos. - Realizar las técnicas de aglutinación en placa. - Realizar las técnicas de aglutinación en tubo. - Realizar las técnicas de inhibición de la aglutinación. - Observar la formación de grumos. - Preparar los reactivos. - Aplicar las muestras en las placas. - Programar los autoanalizadores. - Realizar las incubaciones y los lavados. - Obtener e interpretar los resultados. - Preparar las diluciones de la muestra. - Aplicar la muestra y los reactivos en los pocillos. - Observar mediante el microscopio de fluorescencia. - Indicar los criterios de exclusión y de rechazo de muestras. - Calcular la exactitud y la precisión de los resultados. - Realizar los gráficos de control de calidad. - Inmunidad celular. - Concepto de antígeno y formación de anticuerpos. - Reacción antígeno_anticuerpo. - Sistema de complemento. - Antígenos de histocompatibilidad. - Mecanismos de la respuesta inmune. - Autoinmunidad, inmunodeficiencia e hipersensibilidad. - Precipitación en medio líquido. - Técnicas de precipitación en gel. - Técnicas de aglutinación con hematíes y látex. - Técnicas de inhibición de la aglutinación. - Fijación del complemento. - Radioinmunoensayos. - Enzimainmunoensayos. - Fluoroinmunoensayos. - Ensayos con marcadores quimioluminiscentes y bioluminiscentes. - Microscopio de fluorescencia. - Fluoróforos. - Inmunofluorescencia directa. - Inmunofluorescencia indirecta. - Controles internos y controles externos. - Programas de control de calidad. - Coeficientes de variación. - Gráficos de control de calidad. - Preparar los reactivos y las disoluciones patrón y de control. - Pipetear las muestras y los reactivos. - Incubar las muestras y el reactivo. - Utilizar fotómetros o espectrofotómetros para determinar la absorbancia de las muestras, los patrones y los controles. - Calcular las concentraciones de las muestras y los controles a partir de los patrones e interpretar los resultados obtenidos. - Realizar las curvas de calibrado utilizando fotómetros o espectrofotómetros y las distintas diluciones de las disoluciones patrón. - Preparar los reactivos, las disoluciones patrón y de control. - Programar los autoanalizadores para las determinaciones a realizar. - Trasvasar las muestras a las cubetas de los autoanalizadores. - Interpretar los resultados obtenidos. - Diluir las muestras en la forma adecuada. - Programar los fotómetros para las determinaciones a realizar. - Obtener e interpretar los resultados. - Realizar las operaciones de limpieza y de mantenimiento de los fotómetros de llama. - Inocular las muestras en gasómetros. - Comprobar el contenido de los recipientes de reactivos y de las botellas de gases y, en caso necesario, reponerlos. - Obtener e interpretar los resultados. - Calcular las concentraciones de bicarbonato y de ácido carbónico a partir de los datos de pH y de presión parcial de CO2 obtenidos mediante gasómetros. - Realizar mantenimiento de los electrodos. - Indicar los criterios de exclusión y de rechazo de muestras. - Calcular la exactitud y la precisión de los resultados. - Realizar los gráficos de control de calidad. - Estructura química y conceptos metabólicos básicos sobre glúcidos, lípidos y proteínas. - Enzimología clínica. - Fisiología del equilibrio hidroelectrolítico y ácido_base del organismo. - Interacción de la radiación y la materia: absorción y dispersión de luz. - Ley de Lambert_Beer. - Transmitancia y absorbancia. - Componentes de un fotómetro y de un espectrofotómetro. - Cálculo de las concentraciones mediante el uso de patrones y curvas de calibrado. - Tipos de autoanalizadores utilizados en Bioquímica. - Nefelometría y turbidimetría. - Fundamentos físicos de la fotometría de llama. - Componentes de un fotómetro de llama. - Fundamentos físicos de la espectrofotometría de absorción atómica. - Componentes de un espectrofotómetro de absorción atómica. - Uso de patrones en la espectrofotometría de absorción atómica. - Ecuación de Nernst. - Ecuación de Henderson_Hasselbach. - Determinación de concentraciones mediante electrodos. - Tipos de electrodos. - Controles internos y controles externos. - Programas de control de calidad. - Coeficientes de variación. - Gráficos de control de calidad. - Preparar los reactivos y los soportes. - Preparar las cubetas de electroforesis y las fuentes de alimentación. - Preparar las muestras y aplicarlas en soportes. - Seleccionar los voltajes para realizar la electroforesis. - Revelar los soportes una vez se ha realizado la separación. - Leer los resultados mediante densitómetro. - Preparar las muestras. - Preparar los geles para soporte. - Empaquetar los geles en columnas. - Inocular las muestras y realizar las cromatografías. - Cuantificar las fracciones obtenidas en la separación. - Seleccionar las columnas y los detectores. - Inocular las muestras. - Obtener los cromatogramas. - Calcular las resoluciones, los volúmenes de distribución y las selectividades. - Preparar los materiales y los reactivos necesarios. - Elegir la técnica en función del fármaco o de la droga de abuso a determinar (inmuno-ensayo, cromatografía o fotometría de llama). - Realizar la técnica. - Obtener los resultados. - Indicar los criterios de exclusión y rechazo de muestras. - Calcular la exactitud y la precisión de los resultados. - Realizar los gráficos de control de calidad. - Fundamento teórico de la separación electroforética. - Componentes de un equipo de electroforesis. - Tipos de soporte. - Preparación de los soportes. - Aplicación de la muestra. - Revelado de las placas de electroforesis. - Densitometría. - Isoelectroenfoque. - Electroforesis en SDS. - Inmunoelectroforesis. - Electroinmunodifusión. - Fundamento teórico de las separaciones cromatográficas. - Clasificación de las técnicas cromatográficas. - Cromatografía en papel, cromatografía en capa fina y cromatografía en columna. - Definición y cálculo de los parámetros utilizados en las separaciones cromatográficas. - Mecanismos de separación. - Cromatógrafos empleados en HPLC y cromatografía de gases. - Tipos/clasificación de fármacos y drogas de abuso. - Monitorización de fármacos terapéuticos. - Detección de drogas de abuso. - Controles internos y controles externos. - Programas de control de calidad. - Coeficientes de variación. - Gráficos de control de calidad. - Preparar los cultivos celulares. - Realizar las tinciones. - Realizar las microfotografías y seleccionar las metafases. - Identificar y ordenar los cromosomas. - Preparar las muestras. - Preparar las disoluciones para realizar las amplificaciones de ADN (pH, cebadores y sales). - Programar los ciclos de temperatura. - Recuperar el material genético amplificado. - Realizar la rotura específica de ADN con endonucleasas de restricción. - Realizar la electroforesis de los fragmentos obtenidos. - Leer los resultados. - Estructura del núcleo, la cromatina y los cromosomas. - El ácido desoxirribonucleico como material genético. - Desnaturalización del ADN. - Replicación, transcripción y traducción de la información genética. - Principios básicos de la regulación genética. - Alteraciones en el ADN: mutaciones. - Cultivos de linfocitos y de fibroblastos. - Preparación de las muestras. - Microfotografías e identificación de los cromosomas. - Electroforesis de ácidos nucleicos. - Sondas genéticas. Técnicas de marcado de sondas. - Técnicas de transferencia e hibridación de ácidos nucleicos y proteínas: Southern, Northern y Western ?blotting?, ?Dot Blot? e Hibridación ?in situ?. - Enzimas de restricción y técnicas de ruptura inespecífica de ADN. - Tecnología del ADN recombinante. - ADNc. - Amplificación mediante la reacción en cadena de la polimerasa (PCR). - Análisis de secuencias de ADN. - Transferencia de ADN a células eucariotas. - Aplicación de la genética molecular al diagnóstico de enfermedades hereditarias. Análisis molecular directo e indirecto. Ejemplos de patologías estudiadas mediante técnicas de genética molecular. - Aplicación de la genética molecular al estudio de enfermedades genéticas adquiridas (cáncer). Funciones de los oncogenes y factores de crecimiento. Genes de familia ras. - Aplicación de la genética molecular al estudio de las patologías infecciosas. - Aplicaciones de la genética molecular en medicina legal y forense.PARTE 1. ORGANIZACIÓN Y GESTIÓN DE UN LABORATORIO
MODULO 1. PRÁCTICAS
MÓDULO 2. CONTENIDOS TEÓRICOS
MODULO 3. CONTENIDOS RELACIONADOS CON LA PROFESIONALIDAD
PARTE 2. TÉCNICAS DE PROCESAMIENTO DE MUESTRAS BIOLÓGICAS
MÓDULO 1. PRÁCTICAS
MÓDULO 2. CONTENIDOS TEÓRICOS
MÓDULO 3. CONTENIDOS RELACIONADOS CON LA PROFESIONALIDAD
PARTE 3. TÉCNICAS INMUNOLÓGICAS
MÓDULO 1. PRÁCTICAS
MÓDULO 2. CONTENIDOS TEÓRICOS
MÓDULO 3. CONTENIDOS RELACIONADOS CON LA PROFESIONALIDAD
PARTE 4. TÉCNICAS DE DETERMINACIÓN DE METABOLITOS EN QUÍMICA CLÍNICA
MÓDULO 1. PRÁCTICAS
MÓDULO 2. CONTENIDOS TEÓRICOS
MÓDULO 3. CONTENIDOS RELACIONADOS CON LA PROFESIONALIDAD
PARTE 5. TÉCNICAS DE SEPARACIÓN EN BIOQUÍMICA
MÓDULO 1. PRÁCTICAS
MÓDULO 2. CONTENIDOS TEÓRICOS
MÓDULO 3. CONTENIDOS RELACIONADOS CON LA PROFESIONALIDAD
PARTE 6. TÉCNICAS DE ANÁLISIS MOLECULAR
MÓDULO 1. PRÁCTICAS
MÓDULO 2. CONTENIDOS TEÓRICOS
MÓDULO 3. CONTENIDOS RELACIONADOS CON LA PROFESIONALIDAD