Para qué te prepara este curso subvencionado Curso Gratuito SANL30 Técnico en Inmunología:
La presente formación va dirigida a la acreditación de Competencias profesionales adquiridas a través de la experiencia laboral y de la formación no formal, y tiene como objetivo analizar las técnicas inmunológicas y bioquímicas de análisis y separación, incluyendo las técnicas de identificación genética, empleadas en el laboratorio de Análisis Clínico.
A quién va dirigido:
Este curso está dirigido a los profesionales del mundo de la sanidad, dentro del área profesional técnicas de laboratorio y a todas aquellas personas interesadas en adquirir conocimientos relacionados con la inmunología.
Objetivos de este curso subvencionado Curso Gratuito SANL30 Técnico en Inmunología:
- Analizar técnicas inmunológicas y bioquímicas de análisis y separación. - Definir las técnicas de identificación genética. - Actuar de forma correcta en un laboratorio de Análisis Clínico. - Demostrar una actitud de orden, rigor y conocimiento de procesos de análisis en el terreno experimental y manipulativo. - Actuar con criterios de seguridad e higiene en el acceso al laboratorio de Análisis Clínico.
Salidas Laborales:
Este profesional ejercerá su actividad en laboratorios de Análisis Clínico y afines donde desarrollará su labor en el área de análisis de muestras biológicas.
Resumen:
En el ámbito de la sanidad, los técnicos en inmunología son de primordial importancia ya que conocen todo lo relacionado con los procedimientos que se llevan a cabo en un laboratorio clínico. Así, con el presente curso se pretende analizar las técnicas inmunológicas y bioquímicas de análisis y de separación, incluyendo las técnicas de identificación genética, empleadas en los laboratorios de Análisis Clínicos.
Titulación:
Doble Titulación Expedida por EUROINNOVA BUSINESS SCHOOL y Avalada por la Escuela Superior de Cualificaciones Profesionales
Metodología:
Entre el material entregado en este curso se adjunta un documento llamado Guía del Alumno dónde aparece un horario de tutorías telefónicas y una dirección de e-mail dónde podrá enviar sus consultas, dudas y ejercicios. Además recibirá los materiales didácticos que incluye el curso para poder consultarlos en cualquier momento y conservarlos una vez finalizado el mismo.La metodología a seguir es ir avanzando a lo largo del itinerario de aprendizaje online, que cuenta con una serie de temas y ejercicios. Para su evaluación, el alumno/a deberá completar todos los ejercicios propuestos en el curso. La titulación será remitida al alumno/a por correo una vez se haya comprobado que ha completado el itinerario de aprendizaje satisfactoriamente.
Temario:
PARTE 1. ORGANIZACIÓN Y GESTIÓN DE UN LABORATORIO
MODULO 1. PRÁCTICAS
- Organizar las peticiones analíticas.
- Controlar las existencias de material de consumo en un laboratorio clínico.
- Establecer una planificación del mantenimiento de los equipos del laboratorio.
- Manejar, a nivel de usuario, bases de datos informatizadas sobre pacientes
- Elaborar informes
- Elaborar resúmenes de información científico_técnica
- Interpretar el contenido de la formulación.
- Clasificar las peticiones en función de su procedencia.
- Clasificar las peticiones en función de su prioridad.
- Distribuir las peticiones en las secciones del laboratorio.
- Elaborar listados de trabajo.
- Realizar un inventario.
- Definir las necesidades mínimas de material.
- Cumplimentar órdenes de pedidos.
- Identificar los distintos aparatos de un laboratorio que requieren revisiones periódicas para su mantenimiento.
- Elaborar fichas con los datos necesarios para el control de aparatos (número de revisiones, responsables, protocolo de actuación en caso de fallo del equipo y otros datos).
- Modificar la estructura de campos de la base de datos.
- Introducir datos de pacientes.
- Realizar búsquedas de datos.
- Imprimir de forma «indizada» (según índice).
- Elaborar los cuadros de presentación de datos.
- Realizar consultas en las bases de datos.
- Calcular parámetros estadísticos de actividad.
- Redactar resúmenes de actividad con datos estadísticos.
- Realizar búsquedas de información en bases de datos médicas.
- Elaborar resúmenes de artículos científicos sobre técnicas de laboratorio.
- Elaborar resúmenes de manuales técnicos de funcionamiento de equipos.
MÓDULO 2. CONTENIDOS TEÓRICOS
- Documentación sanitaria.
- Organización jerárquica y departamental de un centro sanitario.
- Normas de seguridad en el trabajo referidas a los aparatos y las instalaciones de los laboratorios clínicos para la prevención de riesgos físicos y químicos.
- Gestión de existencias.
- Conservación de equipos.
- Aplicaciones informáticas.
- Estadística básica.
- Información científico_técnica.
- Documentación clínica.
- Documentación no clínica.
- Organigramas de centros sanitarios.
- Organigrama de un laboratorio.
- Funciones del personal de un laboratorio.
- Sistemas de almacenamiento.
- Métodos de valoración de existencias.
- Normas de seguridad e higiene en los almacenes de centros sanitarios.
- Tipos de equipos de un laboratorio clínico.
- Mantenimiento periódico de los equipos de laboratorio.
- Medidas a tomar en caso de fallo de los equipos.
- Conocimientos básicos de informática.
- Tipos y estructura de las bases de datos.
- Aplicaciones informáticas de gestión y control de almacén.
- Medidas de tendencia central.
- Medidas de dispersión.
- Representaciones gráficas de resultados.
- Estructura de presentación de la información científica.
- Búsqueda de información en bases de datos sanitarias.
MODULO 3. CONTENIDOS RELACIONADOS CON LA PROFESIONALIDAD
- Sentido del orden y pulcritud en la organización del material.
- Ser riguroso en el cumplimiento de los protocolos de mantenimiento y revisión de los aparatos del laboratorio.
- Ser fiable en la transcripción y manipulación de datos informáticos.
- Empatía en la relación, tanto con el paciente como con los componentes del equipo de trabajo.
- Ser estructurado y ordenado en la redacción de informes.
- Adaptación a los cambios tecnológicos.
PARTE 2. TÉCNICAS DE PROCESAMIENTO DE MUESTRAS BIOLÓGICAS
MÓDULO 1. PRÁCTICAS
- Reconocer las características físico_químicas de las distintas muestras
- Obtener las muestras biológicas
- Preparar las muestras para su procesado.
- Preparar disoluciones de distinta concentración.
- Realizar diluciones solicitadas.
- Identificar los tipos de muestras.
- Describir las características físico_químicas de las muestras.
- Determinar si las muestras son adecuadas para proceder a su análisis.
- Preparar tubos con anticoagulantes..
- Recoger orina de 24 horas.
- Tomar muestras de exudado faríngeo.
- Explicar al paciente, en una simulación, el método de recogida y las normas a seguir para la obtención de una muestra.
- Congelar, liofilizar y reconstituir las muestras de suero o de plasma.
- Centrifugar la sangre para la obtención de plasma y suero.
- Centrifugar las muestras de orina.
- Realizar los cálculos necesarios.
- Medir (por pesada o volumetría) las cantidades de soluto determinadas.
- Utilizar el material de vidrio adecuado para realizar la disolución.
- Ajustar el pH de la disolución.
- Expresar los datos de las disoluciones en distintas magnitudes (molaridad, normalidad, molalidad).
- Utilizar los distintos tipos de pipetas.
- Realizar las diluciones solicitadas.
- Calcular la concentración final de la disolución diluida.
MÓDULO 2. CONTENIDOS TEÓRICOS
- Muestras biológicas humanas:
- Obtención de muestras biológicas.
- Manipulación de las muestras biológicas.
- Cálculos en la realización de diluciones.
- Normas de seguridad e higiene en la manipulación de muestras biológicas.
- Concepto de espécimen y de muestra.
- Características generales de la sangre.
Diferencia entre sangre venosa y sangre capilar.
Uso de sangre en ayunas.
Utilización de suero o plasma.
Hemólisis, lipemia o ictericia como fuentes de error.
Anticoagulantes.
- Características generales de la orina.
Sustancias y elementos, formas analizables en muestras de orina.
- Características generales de las heces.
- Muestras seminales; LCR, líquidos serosos, exudados vaginales, exudados uretrales, exudados óticos, exudados conjuntivales y exudados nasofaríngeos; esputo y hemocultivos.
- Obtención de plasma y suero.
- Recogida de orina.
- Recogida de heces.
- Sistemas de transporte de las muestras.
- Sistemas de recepción, identificación y distribución de las muestras.
- Centrifugación de las muestras: fundamento de las técnicas de centrifugación.
- Conservación de las muestras biológicas.
- Normas de seguridad e higiene para la prevención de riesgos biológicos.
MÓDULO 3. CONTENIDOS RELACIONADOS CON LA PROFESIONALIDAD
- Amabilidad en la relación con el paciente.
- Confidencialidad respecto a la información conocida sobre el paciente.
- Ser riguroso en la comprobación de la identificación de las muestras.
- Coordinación con los componentes del equipo multidisciplinar de trabajo.
- Iniciativa para afrontar imprevistos y contingencias.
- Sentido del orden en la gestión de las listas de trabajo.
- Adaptación a los cambios tecnológicos.
PARTE 3. TÉCNICAS INMUNOLÓGICAS
MÓDULO 1. PRÁCTICAS
- Realizar las técnicas de inmunoprecipitación en gel.
- Realizar las técnicas de aglutinación.
- Realizar las técnicas de enzimainmunoensayo para la detección de antígenos.
- Detectar anticuerpos por inmunofluorescencia.
- Realizar el control de calidad de los resultados.
- Preparar geles de agarosa.
- Enfrentar antígenos y anticuerpos en reacciones de simple y doble difusión.
- Determinar las concentraciones de antígenos mediante inmunodifusión radial.
- Preparar los reactivos.
- Realizar las técnicas de aglutinación en placa.
- Realizar las técnicas de aglutinación en tubo.
- Realizar las técnicas de inhibición de la aglutinación.
- Observar la formación de grumos.
- Preparar los reactivos.
- Aplicar las muestras en las placas.
- Programar los autoanalizadores.
- Realizar las incubaciones y los lavados.
- Obtener e interpretar los resultados.
- Preparar las diluciones de la muestra.
- Aplicar la muestra y los reactivos en los pocillos.
- Observar mediante el microscopio de fluorescencia.
- Indicar los criterios de exclusión y de rechazo de muestras.
- Calcular la exactitud y la precisión de los resultados.
- Realizar los gráficos de control de calidad.
MÓDULO 2. CONTENIDOS TEÓRICOS
- Fisiología de la respuesta inmune.
- Técnicas de análisis basadas en la precipitación y aglutinación de complejos antígeno_anticuerpo.
- Inmunoensayos.
- Inmunofluorescencia.
- Control de calidad de las técnicas inmunológicas.
- Inmunidad celular.
- Concepto de antígeno y formación de anticuerpos.
- Reacción antígeno_anticuerpo.
- Sistema de complemento.
- Antígenos de histocompatibilidad.
- Mecanismos de la respuesta inmune.
- Autoinmunidad, inmunodeficiencia e hipersensibilidad.
- Precipitación en medio líquido.
- Técnicas de precipitación en gel.
- Técnicas de aglutinación con hematíes y látex.
- Técnicas de inhibición de la aglutinación.
- Fijación del complemento.
- Radioinmunoensayos.
- Enzimainmunoensayos.
- Fluoroinmunoensayos.
- Ensayos con marcadores quimioluminiscentes y bioluminiscentes.
- Microscopio de fluorescencia.
- Fluoróforos.
- Inmunofluorescencia directa.
- Inmunofluorescencia indirecta.
- Controles internos y controles externos.
- Programas de control de calidad.
- Coeficientes de variación.
- Gráficos de control de calidad.
MÓDULO 3. CONTENIDOS RELACIONADOS CON LA PROFESIONALIDAD
- Seguimiento de los protocolos establecidos para la aplicación de las técnicas.
- Observación para la detección de errores durante la aplicación de las técnicas.
- Ser riguroso en la realización de los controles de calidad y en el tratamiento de los datos obtenidos.
- Cumplimiento de las normas de seguridad e higiene laboral.
- Iniciativa y seguridad en la toma de decisiones.
- Adaptación a los cambios tecnológicos.
PARTE 4. TÉCNICAS DE DETERMINACIÓN DE METABOLITOS EN QUÍMICA CLÍNICA
MÓDULO 1. PRÁCTICAS
- Realizar las determinaciones analíticas de metabolitos y enzimas con fotómetros o espectrofotómetros.
- Realizar las determinaciones de fotometría de absorción molecular de metabolitos y enzimas con autoanalizadores.
- Determinar los iones sodio y potasio con fotómetros de llama.
- Realizar las determinaciones de gases en sangre y el equilibrio ácido_base:
- Realizar el control de calidad de los resultados.
- Preparar los reactivos y las disoluciones patrón y de control.
- Pipetear las muestras y los reactivos.
- Incubar las muestras y el reactivo.
- Utilizar fotómetros o espectrofotómetros para determinar la absorbancia de las muestras, los patrones y los controles.
- Calcular las concentraciones de las muestras y los controles a partir de los patrones e interpretar los resultados obtenidos.
- Realizar las curvas de calibrado utilizando fotómetros o espectrofotómetros y las distintas diluciones de las disoluciones patrón.
- Preparar los reactivos, las disoluciones patrón y de control.
- Programar los autoanalizadores para las determinaciones a realizar.
- Trasvasar las muestras a las cubetas de los autoanalizadores.
- Interpretar los resultados obtenidos.
- Diluir las muestras en la forma adecuada.
- Programar los fotómetros para las determinaciones a realizar.
- Obtener e interpretar los resultados.
- Realizar las operaciones de limpieza y de mantenimiento de los fotómetros de llama.
- Inocular las muestras en gasómetros.
- Comprobar el contenido de los recipientes de reactivos y de las botellas de gases y, en caso necesario, reponerlos.
- Obtener e interpretar los resultados.
- Calcular las concentraciones de bicarbonato y de ácido carbónico a partir de los datos de pH y de presión parcial de CO2 obtenidos mediante gasómetros.
- Realizar mantenimiento de los electrodos.
- Indicar los criterios de exclusión y de rechazo de muestras.
- Calcular la exactitud y la precisión de los resultados.
- Realizar los gráficos de control de calidad.
MÓDULO 2. CONTENIDOS TEÓRICOS
- Estructura, función y metabolismo de las sustancias analizables en el laboratorio de Química Clínica.
- Espectrofotometría de absorción y dispersión.
- Espectrofotometría de emisión y absorción atómica.
- Técnicas basadas en la detección de potenciales eléctricos.
- Control de calidad en Química Clínica.
- Estructura química y conceptos metabólicos básicos sobre glúcidos, lípidos y proteínas.
- Enzimología clínica.
- Fisiología del equilibrio hidroelectrolítico y ácido_base del organismo.
- Interacción de la radiación y la materia: absorción y dispersión de luz.
- Ley de Lambert_Beer.
- Transmitancia y absorbancia.
- Componentes de un fotómetro y de un espectrofotómetro.
- Cálculo de las concentraciones mediante el uso de patrones y curvas de calibrado.
- Tipos de autoanalizadores utilizados en Bioquímica.
- Nefelometría y turbidimetría.
- Fundamentos físicos de la fotometría de llama.
- Componentes de un fotómetro de llama.
- Fundamentos físicos de la espectrofotometría de absorción atómica.
- Componentes de un espectrofotómetro de absorción atómica.
- Uso de patrones en la espectrofotometría de absorción atómica.
- Ecuación de Nernst.
- Ecuación de Henderson_Hasselbach.
- Determinación de concentraciones mediante electrodos.
- Tipos de electrodos.
- Controles internos y controles externos.
- Programas de control de calidad.
- Coeficientes de variación.
- Gráficos de control de calidad.
MÓDULO 3. CONTENIDOS RELACIONADOS CON LA PROFESIONALIDAD
- Seguimiento de los protocolos establecidos para la aplicación de las técnicas.
- Observación para la detección de errores durante la aplicación de las técnicas.
- Ser riguroso en la realización de los controles de calidad y en el tratamiento de los datos obtenidos.
- Cumplimiento de las normas de seguridad e higiene laboral.
- Iniciativa y seguridad en la toma de decisiones.
- Adaptación a los cambios tecnológicos.
PARTE 5. TÉCNICAS DE SEPARACIÓN EN BIOQUÍMICA
MÓDULO 1. PRÁCTICAS
- Realizar la electroforesis de productos biológicos en soporte de acetato de celulosa.
- Realizar cromatografías líquidas de intercambio iónico en columna.
- Realizar una cromatografía líquida de alta precisión (HPLC).
- Realizar la determinación de fármacos y drogas de abuso.
- Realizar el control de calidad de los resultados.
- Preparar los reactivos y los soportes.
- Preparar las cubetas de electroforesis y las fuentes de alimentación.
- Preparar las muestras y aplicarlas en soportes.
- Seleccionar los voltajes para realizar la electroforesis.
- Revelar los soportes una vez se ha realizado la separación.
- Leer los resultados mediante densitómetro.
- Preparar las muestras.
- Preparar los geles para soporte.
- Empaquetar los geles en columnas.
- Inocular las muestras y realizar las cromatografías.
- Cuantificar las fracciones obtenidas en la separación.
- Seleccionar las columnas y los detectores.
- Inocular las muestras.
- Obtener los cromatogramas.
- Calcular las resoluciones, los volúmenes de distribución y las selectividades.
- Preparar los materiales y los reactivos necesarios.
- Elegir la técnica en función del fármaco o de la droga de abuso a determinar (inmuno-ensayo, cromatografía o fotometría de llama).
- Realizar la técnica.
- Obtener los resultados.
- Indicar los criterios de exclusión y rechazo de muestras.
- Calcular la exactitud y la precisión de los resultados.
- Realizar los gráficos de control de calidad.
MÓDULO 2. CONTENIDOS TEÓRICOS
- Electroforesis.
- Técnicas electroforéticas especiales.
- Cromatografía.
- Determinación de fármacos y drogas de abuso.
- Control de calidad de las técnicas electroforéticas y cromatográficas.
- Fundamento teórico de la separación electroforética.
- Componentes de un equipo de electroforesis.
- Tipos de soporte.
- Preparación de los soportes.
- Aplicación de la muestra.
- Revelado de las placas de electroforesis.
- Densitometría.
- Isoelectroenfoque.
- Electroforesis en SDS.
- Inmunoelectroforesis.
- Electroinmunodifusión.
- Fundamento teórico de las separaciones cromatográficas.
- Clasificación de las técnicas cromatográficas.
- Cromatografía en papel, cromatografía en capa fina y cromatografía en columna.
- Definición y cálculo de los parámetros utilizados en las separaciones cromatográficas.
- Mecanismos de separación.
- Cromatógrafos empleados en HPLC y cromatografía de gases.
- Tipos/clasificación de fármacos y drogas de abuso.
- Monitorización de fármacos terapéuticos.
- Detección de drogas de abuso.
- Controles internos y controles externos.
- Programas de control de calidad.
- Coeficientes de variación.
- Gráficos de control de calidad.
MÓDULO 3. CONTENIDOS RELACIONADOS CON LA PROFESIONALIDAD
- Seguimiento de los protocolos establecidos para la aplicación de las técnicas.
- Observación para la detección de errores durante la aplicación de las técnicas.
- Ser riguroso en la realización de los controles de calidad y en el tratamiento de los datos obtenidos.
- Cumplimiento de las normas de seguridad e higiene laboral.
- Iniciativa y seguridad en la toma de decisiones.
- Adaptación a los cambios tecnológicos.
PARTE 6. TÉCNICAS DE ANÁLISIS MOLECULAR
MÓDULO 1. PRÁCTICAS
- Realizar estudios cromosómicos.
- Realizar las técnicas de PCR.
- Obtener y separar fragmentos de ADN
- Preparar los cultivos celulares.
- Realizar las tinciones.
- Realizar las microfotografías y seleccionar las metafases.
- Identificar y ordenar los cromosomas.
- Preparar las muestras.
- Preparar las disoluciones para realizar las amplificaciones de ADN (pH, cebadores y sales).
- Programar los ciclos de temperatura.
- Recuperar el material genético amplificado.
- Realizar la rotura específica de ADN con endonucleasas de restricción.
- Realizar la electroforesis de los fragmentos obtenidos.
- Leer los resultados.
MÓDULO 2. CONTENIDOS TEÓRICOS
- Estructura y función de los ácidos nucleicos.
- Objetivos y técnicas de los estudios cromosómicos.
- Técnicas básicas en el diagnóstico molecular.
- Aplicación de la genética molecular a:
- Estructura del núcleo, la cromatina y los cromosomas.
- El ácido desoxirribonucleico como material genético.
- Desnaturalización del ADN.
- Replicación, transcripción y traducción de la información genética.
- Principios básicos de la regulación genética.
- Alteraciones en el ADN: mutaciones.
- Cultivos de linfocitos y de fibroblastos.
- Preparación de las muestras.
- Microfotografías e identificación de los cromosomas.
- Electroforesis de ácidos nucleicos.
- Sondas genéticas. Técnicas de marcado de sondas.
- Técnicas de transferencia e hibridación de ácidos nucleicos y proteínas: Southern, Northern y Western ?blotting?, ?Dot Blot? e Hibridación ?in situ?.
- Enzimas de restricción y técnicas de ruptura inespecífica de ADN.
- Tecnología del ADN recombinante.
- ADNc.
- Amplificación mediante la reacción en cadena de la polimerasa (PCR).
- Análisis de secuencias de ADN.
- Transferencia de ADN a células eucariotas.
- Aplicación de la genética molecular al diagnóstico de enfermedades hereditarias.
Análisis molecular directo e indirecto.
Ejemplos de patologías estudiadas mediante técnicas de genética molecular.
- Aplicación de la genética molecular al estudio de enfermedades genéticas adquiridas (cáncer).
Funciones de los oncogenes y factores de crecimiento.
Genes de familia ras.
- Aplicación de la genética molecular al estudio de las patologías infecciosas.
- Aplicaciones de la genética molecular en medicina legal y forense.
MÓDULO 3. CONTENIDOS RELACIONADOS CON LA PROFESIONALIDAD
- Seguimiento de los protocolos establecidos para la aplicación de las técnicas.
- Observación para la detección de errores durante la aplicación de las técnicas.
- Ser riguroso en la realización de los controles de calidad y en el tratamiento de los datos obtenidos.
- Cumplimiento de las normas de seguridad e higiene laboral.
- Iniciativa y seguridad en la toma de decisiones.
- Adaptación a los cambios tecnológicos.
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